免疫组化基本技术(二)免疫组化基本技术(二).pptVIP

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3.制备细胞玻片应注意 (1)易脱片; (2)细胞应集中在直径0.6~1.0cm的圆圈内,总数105-106; (3)富于粘液的标本,未经处理不宜做IHC。 4.活细胞标本的制备法 培养的活细胞可分贴壁和悬浮二种。贴壁细胞可将 (1)细胞大量培养后,经消化将细胞制成悬液(106)涂在涂有切片粘合剂的载玻片上,凉干后固定。 (2)将细胞直接培养在盖玻片上。 (3)将细胞直接培养在6孔或9孔板上,经固定后可行IHC。 五、组织标本的固定 1.目的 (1)防止组织细胞的死后变化,防止自溶和腐败,以保持组织细胞的固有形态。 (2)使细胞内的蛋白质、脂肪、糖和酶等各种抗原成份转变成不溶性物质,以保持它原有的结构与生活时相仿。 (3)使组织中的各种物质沉淀和凝固起 来而产生不同的折射率,造成光学 上的差异,以便染色后易于鉴别和 观察。 (4)固定剂兼有硬化作用、使组织硬化、 增加组织硬度、便于制片。 (5)防止细胞过度收缩或膨胀而失 去其原有形态结构。 (6)经过固定的组织能对染料产生 不同的亲和力而着色清晰,便 于辨认。 2.固定液的种类 (1)甲醛固定液 10%福尔马林 10%中性福尔马林 10%中性缓冲福尔马林 (2)4%多聚甲醛固定液 (3)Bouin S液及改良Bouin S液 (4)Zenker S液 重铬酸钾 25mg 氯化汞 10g 冰醋酸 50ml 蒸馏水 800ml (5)Zamboni S液 多聚甲醛 20g 饱和苦味酸 150ml PB液至 1000ml (6)PLP固定液:过碘酸-赖氨酸-多聚甲醛固定液。该固定剂较适合于富含糖类组织,对超微结构及许多抗原的抗原性保存较好。 (7)PLPD固定液 取PLP固定液25ml,加 入2.5%重铬酸钾25ml。 (8)Kanovsky S液 (9)Methacarn固定液 甲醇60ml,氯仿 30ml,醋酸10ml,混均后4℃保存备 用,对核内抗原的保存效果较好。 (10)PFG液 (11)0.4%对苯醌 (12)碳二亚酰胺-戊二醛(ECG-G)液 (13)丙酮及醇类固定剂 丙酮、乙醇 类固定剂其固定原理主要是对蛋白 质的沉淀而发生固定作用。 3.固定方法的选择及注意事项 (1)大小 2cm×2cm×0.3cm (2)及时固定 (3)固定时间 固定时间要视组织块的厚薄,固定液的种类及浓度,温度而定,原则上,组织块大小与固定时间成正比,固定液的穿透力及浓度与固定时间成反比。 (4)组织固定后必须彻底冲洗。 六、组织脱水、浸蜡及包埋 1.目的 由于石蜡不溶于水和醇类试剂,只溶解在二甲苯类试剂中。因而,组织经固定和水洗后含大量水分,需用乙醇类试剂进行脱水,水脱完后,组织内含有大量的乙醇,还必须用能溶解乙醇的二甲苯来置换,最后经浸蜡,组织细胞内被大量石蜡支称,才使组织能用于石蜡切片。 2.脱水剂的种类:非石蜡溶剂的脱水剂和脱水兼石蜡溶剂的脱水剂。 常用的脱水剂:(1)乙醇;(2)丙酮;(3)正丁醇;(4)淑丁醇;(5)环乙酮;(6)松脂醇;(7)二氧陆环。 3.常用的透明剂:(1)二甲苯;(2)甲苯;(3)苯;(4)香柏油;(5)苯甲酸甲酯;(6)氯仿;(7)冬青油;(8)苯胺油 4.原则 脱水方法甚多,一般需逐级进行脱水,否则可引起组织强烈收缩,组织变形。 在脱水完全的前提下,组织的透明必须彻底,但不能过长,否则会引起组织切片困难。 5.常规石蜡包埋过程 (1)脱水:75%、85%乙醇,95%Ⅰ、Ⅱ、 Ⅲ乙醇,无水乙醇Ⅰ、Ⅱ、Ⅲ。 (2)透明:二甲苯Ⅰ、二甲苯Ⅱ、二甲苯Ⅲ (3)浸蜡:石蜡Ⅰ、石蜡Ⅱ、石蜡Ⅲ (4)石蜡包埋:修蜡块,标号 * 免疫组化基本技术(二) 体液沉渣细胞学切片制作: 取两只10ml试管,分别装入体液10ml,离心后留取沉渣。 滴入蛋清1~2滴混匀,加入固定液5ml,固定1h,离心后留取沉渣。 将试管剪开,底部1cm处,取出沉渣,用擦镜纸包好,进行常规脱水、包埋、石蜡切片。 该方法可以免除大范围的阅片,又可避免漏诊, 可重复切片, 使IHC标记更为方便。 自动细胞离心涂片机制作胸腹水细胞学涂片方法。 影响固定

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