‘乔纳金’苹果及其脆肉变株的表型与分子鉴定.docVIP

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‘乔纳金’苹果及其脆肉变株的表型与分子鉴定.doc

‘乔纳金’苹果及其脆肉变株的表型与分子鉴定   摘 要:以 ‘乔纳金’苹果品种为对照,从果实与叶片形态、果实硬度、脆度、香气成分等表型特征以及AFLP分子标记两个层面,对脆肉变株进行了鉴定。结果表明:①‘乔纳金’苹果与其脆肉变株果实与叶片形态基本一致,但脆肉变株的平均单果重仅是‘乔纳金’苹果的83.4%,而果实硬度与脆度分别是‘乔纳金’苹果的1.5倍和1.2倍,具有果实变小、硬度及脆度变大的特点;②两份材料果实香气成分种类总数基本一致,但‘乔纳金’苹果酯类成分种类多、含量高,而脆肉变株醇类和醛类成分种类多、含量高;③AFLP分子标记聚类分析将‘乔纳金’及其脆肉变株聚为一类。结论认为,该脆肉变株就是‘乔纳金’苹果的脆肉芽变。   关键词:乔纳金;脆肉变株;表型特征; AFLP分子标记   中图分类号:S661.102.7文献标识号:A文章编号:1001-4942(2013)09-0023-03   芽变是体细胞遗传物质的突变,而芽变选种是优中选优,是果树品种改良的有效途径之一,庞大的元帅系及富士系苹果品种群的形成就是一个很好的例证。因此,通过芽变选种,有力推动了苹果品种的升级换代和优化调整[1~5]。‘乔纳金’是以‘金冠’和‘红玉’为亲本杂交育成的三倍体苹果品种,果个大,品质优,深受欧美市场的消费者欢迎,但贮藏性较差,果实容易软化变绵,影响其产业发展;2004年在山东聊城某苹果园内发现一个‘乔纳金’脆肉变株,枝、叶、花、果的形态特征与‘乔纳金’基本一致,仅是变异株的果个变小、果肉变脆,很有可能是‘乔纳金’苹果的脆肉芽变株。为了进一步明确变异的真伪,本研究从表型及分子两个层面对该变株进行了鉴定,现将研究结果报道如下。   1 材料与方法   1.1 材料   试验于2008~2012年在山东农业大学作物生物学国家重点实验室进行。试材为采自山东省聊城市南郊郑管屯村苹果园的‘乔纳金’及其脆肉变株成熟果实。试验树立地条件一致,常规管理,生长结果正常。每个品种采果型端正、成熟度一致、无病虫害及机械损伤的30个果实及30片叶片,带回实验室进行各项指标的测定。   1.2 方法   1.2.1 果肉硬度与脆度及果实与叶片形态指标的测定 果实硬度和脆度采用马庆华等(2011)[6]的方法,用英国Stable Micro Systems公司生产的TA.XT plus质构仪,采用P/2n针状探头(直径2 mm),测前速度2 mm/s,贯入速度1 mm/s,测后速度5 mm/s,穿刺深度为8 mm,最小感知力为10 g。每次测定随机取5个果实,在阴阳两面测定;果实重量用百分之一天平测量,果实、叶片纵横径利用游标卡尺测量,测量10个样品作为重复。   1.2.2 果实香气成分测定 分别取‘乔纳金’及其变株异成熟果实,洗净切碎后准确称取40 g放入100 ml锥形瓶中,加入内标物3-壬酮(0.4 g/L) 5 μl,加盖封口后放在50℃磁力搅拌加热板上平衡10 min。将纤维萃取头插入250℃的GC进样口老化20 min后插入已平衡好的样品瓶中萃取35 min,然后插入GC进样口,230℃解吸2 min,进行GC-MS 检测。   气相色谱—质谱分析条件:参照陈美霞等(2005)[7]的方法并略做修改,利用Shimadzu GC/MS-QP2010气相色谱-质谱联用仪。色谱条件:色谱柱Rtx-1MS柱(30 m×0.25 mm×0.25 μm);进样口温度200℃;柱温:初始温度35℃保持2 min,以6℃/min升至120℃保持1 min,然后以10℃/min升至180℃后以20℃/min升至230℃保持5 min。质谱条件:载气为He,流量1.03 ml/min,电离方式EI,电子能量70 eV。离子源温度200℃,扫描质量范围:45~450 amu。进样:不分流进样。   定性方法:得到GC/MS分析总离子流图(TIC)后,经计算机检索同时与NIST05质谱库相匹配,并结合人工图谱解及资料分析,确认香味物质的各种化学成分。定量方法:按峰面积归一化法求得各成分的相对质量百分含量,并选择3-壬酮为内标进行定量。   1.2.3 AFLP分子标记鉴定 采用CTAB法提取‘乔纳金’及其脆肉变株等29个苹果品种(系)基因组DNA,荧光AFLP扩增采用苑兆和等(2009)[8]方法在北京鼎国生物技术有限责任公司进行,其中选择性扩增引物MseⅠ为FAM荧光标记引物,用 SHAN程序中的 UPGMA方法进行聚类分析,并通过 Tree plot模块生成聚类图。   2 结果与分析   2.1 ‘乔纳金’苹果及其脆肉变株果实与叶片指标的比较   ‘乔纳金’苹果与其脆肉变株的果实和叶片形态基本一致(图1),果实均为扁圆形,叶片均为

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