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实验五微生物的显微镜直接记数法
实验六 酵母菌的血球计数板计数法数法
一、实验目的
学习血球计数板计数法使用的原理与方法,并学习区别死活酵母的方法。
二、基本原理
测定微生物数量方法很多,通常采用的有显微镜直接计数法、平板计数法、细胞和原生质体总量计测法等三类。
镜检计数法适用于各种含单细胞菌体的纯培养悬浮液,如有杂菌或杂质常不易分辨。菌体较大的酵母菌或霉菌抱子可采用血球计数板;一般细菌则采用彼得罗夫?霍泽(Petroff Hausser)细菌计数板。两种计数板的原理和部件相同,只是细菌计数板较薄,可以使用油镜观察。而血球计数板较厚,不能使用油镜,故细菌不易看清。
血球计数板是一块特制的厚载玻片,载玻片上有4 条槽而构成3 个平台。中间的平台较宽,其中间又被一短横槽分隔成两半,每个半边上面各有一个方格网(图l8)。每个方格网共分9 大格,其中间的一大格(又称为计数室)常被用作微生物的计数。常见血球计数板的计数室有两种规格一种是16×25型,称为麦氏血球计数板,共有16个中方格,而每个中方格又分成25个小方格。另一种是25×l6 型,称为希里格式血球计数板,共有25个中方格,而每个中方格又分成16个小方格。但是不管哪种规格的血球计数板其计数室的每个大方格均由400个小方格组成(图19)。
每个大方格边长为1mm ,则每一大方格的面积为1mm2,每个小方格的面积为1/4000mm2,盖上盖玻片后,盖玻片与计数室底部之间的高度为0.1mm,所以每个计数室(大方格)的体积为0.1mm3,每个小方格的体积为1/4000mm3。使用血球计数板直接计数时,先要测定每个小方格(或中方格)中微生物的数量,再换算成每ml菌液(或每g样品)中微生物细胞的数量。
图18 血球计数板的构造
A、平面图(中间平台分为两半,各刻有一个方格网)
B、侧面图(中间平台与盖玻片之间高度为0.1mm的间隙)
三、实验器材
1.菌种 酿酒酵母(Saccharomyces cerevisiae)菌悬液;
2.仪器 显微镜,血球计数板;
3.材料 盖玻片,吸水纸,尖嘴滴管。
4.染料 美兰染液
图19 血球计数板计数网的区分和细分格
四、操作步骤和内容
1.视待测菌液浓度,加无菌水作适当稀释,以每小格的菌数可数为度。应当稀释到每各中格大约30个左右的酵母,60-100左右的细菌。准确计算稀释倍数。
2.血球计数板使用前应当清洗干净,用95%酒精棉球擦洗,切勿用火焰烘干。取洁净的血球计数板一块,在计数室上盖上一块盖玻片。
3.将酵母菌液摇匀,用滴管吸取少许,从计数板中间平台两侧的沟槽内沿盖玻片的边缘滴入一小滴(不宜过多),使菌液沿两玻片间自行渗入计数室,勿使产生气泡,并用吸水纸吸去多余菌液,避免盖玻片上浮。也可以将菌液直接滴加在计数室上,然后加盖盖玻片(勿使产生气泡)。
4.静置约5min,先在低倍镜下找到计数室后,再转换高倍镜观察计数。
5.计数时用25中格的计数板,要按对角线方位,取左上、左下、右上、右下、中央的5个中格中的菌数。如果是16中格计数板,计左上、左下、右上、右下四格的菌数。由于菌体在计数室中处于不同的空间位置,要在不同的焦距下才能看到,因而观察时必须不断调节微调螺旋,方能数到全部菌体,防止遗漏。如菌体位于中格的双线上,计数时则数上线不数下线,数左线不数右线,以减少误差。
6.凡酵母菌的芽体达到母细胞大小一半时,即可作为两个菌体计算。每个样品重复分数2-3次(每次数值不应误差过大,否则应重新操作),取其平均值,按下述公式计算出每ml菌液所含酵母菌细胞数。
式中A代表五个中格中的菌数,B代表菌液本身的稀释度
7.血球计数板用后,在水龙头上用水柱冲洗干净,切勿用硬物洗刷或抹擦,以免损坏网格刻度。洗净自行晾干,或用滤纸沾干。最后用擦镜纸擦干净。若计数是病原微生物,则需先浸泡在5%的石炭酸溶液中进行消毒后清洁。
五、注意事项
1.加酵母菌液时,量不应过多,不能产生气泡。
2.由于酵母菌菌体无色透明,计数观察时应仔细调节光线。或者用吕氏碱性美蓝染液处理酵母菌液。美兰是一种弱的氧化剂,还原后变为无色,酵母细胞死活的鉴别就是利用美兰的这一特性。活的酵母细胞由于新陈代谢不断进行,能将美兰还原,而死的酵母细胞则不能,染色须严格控制时间。
六、实验结果
培养( )℃( )小时 稀释( )倍
七、思考题
1.血球计数板产生误差的主要原因在哪里?如何减少误差?
2.采用血球计数板计数和平板菌落计数的主要差异在哪里?
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