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实验二 琼脂糖凝胶电泳 实验目的: 1掌握琼脂糖凝胶电泳的原理和方法。 2.学会使用电泳仪。 3.了解实验室有毒药品的处理和保护措施。 1.仪器及耗材: 水平电泳槽,电泳仪、凝胶成像分析系统、微波炉、微量移液器、透明胶带、点样板。100ml或250ml锥形瓶、量筒、吸头等。 2.试剂及配制: 50×TAE缓冲液的配制:2mol/L Tris-乙酸,0.05mol/L EDTA(Ph8.0) 配制1000ml Tris 242g 冰醋酸 57.1ml 0.5mol/L EDTA 100ml 加入600ml去离子水后搅拌溶解,将溶液定容至1L后。高温高压灭菌,室温保存。 1×TAE缓冲液的配制: 称量20ml的50×TAE缓冲液,在加入980ml的去离子水。 溴化乙啶贮存液:10mg/ml 溴化乙啶 配制:100ml 称取1g溴化乙啶,置于100ml烧杯中,加入80ml去离子水后搅拌溶解。将溶液定容至100ml后,转移到棕色瓶中,室温保存。 6×上垟缓冲液:0.25%溴酚蓝,0.25%二甲苯青FF,30%甘油。 配制:10ml 1.制备1%琼脂糖凝胶(大胶用70ml,小胶用50ml):称取0.7g(0.5g)琼脂糖置于锥形瓶中加入70ml(50ml)1×TAE,瓶口倒扣小烧杯。微波炉加热煮沸3次至琼脂糖全部融化,摇匀,即成1.0%琼脂糖凝胶液。 2.胶板制备:取电泳槽内有机玻璃内槽(制胶槽)洗干净、晾干,放入制胶玻璃板。去透明胶带将玻璃板与内槽两端边缘封好,形成模子。将内槽至于水平位置,并在固定位置放好梳子。将冷却到650C左右的琼脂糖凝胶液混匀小心地倒入内槽玻璃板上,使胶液缓慢展开,直到整个玻璃板表面形成均匀胶层。室温下静置直至凝胶液完全凝固,垂直轻拔梳子,取下胶带,将凝胶及内槽放入电泳槽中。添加1×TAE电泳缓冲液至没过胶板为止。 3.加样:在点样板或parafilm上混合DNA样品和上样缓冲液,上样缓冲液的最终稀释倍数应不小于1X。用10ul微量移液器分别将样品加入胶板的样品小槽内,每加完一个样品,应更换一个加样头,以防污染,加样时勿碰坏样品孔周围的凝胶面。(注意:加样前要先记下加样的顺序)。 4.电泳:加样后的凝胶板立即通电进行电泳,电压5V/CM,样品由负极(黑色)向正极(红色)方向移动。电压升高,琼脂糖凝胶的有效分离范围降低。当溴酚蓝移动到距离胶板下沿约1cm处时,停止电泳。 5.电泳完毕后,取出凝胶,用含有0.5ug/ml的溴化乙锭1×TAE溶液染色约20min,再用清水漂洗10min。 6.观察照相:在紫外灯下观察,DNA存在则显示出红色荧光条带,采用凝胶成像系统拍照保存。 1.配琼脂糖时应使其完全溶化后方可制胶。 2.琼脂糖凝胶易于破碎,操作时要轻缓。 3.电泳时应注意电源线路,预防触电。 4.溴化乙锭具有致癌作用,配制及使用时应带乳胶或一次性塑料手套。并在专门的实验室内使用。 5.紫外线对人体有损伤作用,开关时间不宜太长,注意防护。 6.DNA带形状模糊:DNA加样过多;电压太高;凝胶中有气泡。 7.质粒DNA的存在形式有3种,①共价闭环DNA(cccDNA),常以超螺旋形式存在;②开环DNA(ocDNA),此种质粒DNA的两条链中有一条发生一处或多处断裂,因此可以自由旋转从而消除张力,形成松弛的环状分子;③线状DNA,因质粒DNA的两条链在同一处断裂而造成。因此质粒DNA电泳的结果中有可能出现三条泳带,它们的泳动速度为:cccDNA>线状DNA>ocDNA。 1.采用琼脂糖凝胶电泳分离DNA的有效分离范围是多少?采用什么方法分离巨大的DNA分子? 2.一般情况下碱裂解法提取的质粒在琼脂糖凝胶电泳中会出现几条带?各条带有什么不同? 3.在电泳时可采取几种方式使DNA带上溴化乙锭?
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