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时间,提高了药物在胃部的局部浓度。
3讨论
本文作者按照文献上甲硝唑在人血浆、血清和粪便中浓度的HPLC测定法,无法将SD大鼠胃组织的一
个内源性杂质峰与甲硝唑峰分开。胃组织蛋白沉淀剂曾试验了无水乙醇、丙酮、5%高氯酸、乙腈和甲醇等,
结果表明采用甲醇一h((15:85)为流动相,只有以甲醇为胃组织蛋白沉淀剂才能将内源性杂质峰与甲硝唑峰
分开。(参考文献略)
PELA幽门螺杆菌口服疫苗微球的制备及粘膜免疫应答研究
往建敏王缚照邹全明 曾蟀锟(第三军医大学医学检验系西安400038)
幽门螺杆菌(Helicobacter
pylori,Hv)是导致B型胃炎、消化性溃疡以及与胃牯膜相关的胃淋巴系统疾病
产生的主要诱因。因Hp较易再次感染且耐药菌株不断增多,针对Hp感染的病人现多采用抗生索三联治疗
法,但治愈率不高且不能预防H晒再次感染。rip1:1服疫苗方便、安全,能有效诱使}Ip感染的粘膜免疫,现已
成为许多研究昔追逐的热点。以可生物降解、生物相容性好的高分子材料包裹抗愿制作微球疫苗,具有接种
简单、保护抗原、靶向投递、佐剂活性等优点,口服免疫后,能引起系统和局部免疫。聚乳酸(PLA)及聚乳酸
与聚乙醇酸共聚物(PLGA)是目前在生物医学工程中应用最多的生物降解材料,但疏水性强、生物相容性
差,降解终产物乳酸、乙醇酸对生物体产生酸性微环境,其疫苗教球容易被网状上皮系统的吞噬细胞俘获,在
生物体内存在的半衰期短。若聚乳酸中引八亲水性的聚乙二醇,形成A—B—A型聚醚类嵌段共聚物
(PELA),可明显改善PLA或PLGA存在的弊端。
本研究采用Hp全菌超声上清经PELA包裹后制备}币口服疫苗微球,口服免疫小鼠,分别以
secreting
ELISPOT、ELISA法检测了PP结抗体形成细胞(antibody
sle,A,分析口服免疫后小鼠的粘膜免疫状况,为研制高效Hp疫苗提供理论依据。
l实验仪酱殛材料
Leitz、Wild
h伊s52照相设备(德
M1:$46、Photoaummay、Wild
1.1仪器LeitzI)iaplan一光学显微镜wild
国)。Amray型扫描电子显微镜。wL一2激光粒度分析仪,TV显微系统(重庆大学光电学院研制),可见/紫
干燥器(国产),低温冷冻真空干燥器(国产)。
只随机分为5组,分别为Hp超声上清免疫组(Ag组)、徽球包裹}如超声上清一次免疫组(M1组)、搬球包裹
Hp超声上清两次免疫组(M2组)、不包裹抗原空微球组(MO组)、PBS对照组。
1.3菌苗株Hp971023、Hp980706、HpM由本室分离保存。
它试剂为国产分折纯。
2实验方法
2.2
726
}
—
一r
尽后,微球固化离心收集,双蒸水洗涤5~6次,低温真空干燥,贮存备用。
2.3
净水替代抗原蛋白的水溶液)。
2.4造影微球的制备将一定浓度的泛影葡胺(造影剂)替代1.6复乳法制教球的w内,后同疫苗微球的制
备步骤。
2.5微球特性检测微球的表面形态用AMRAY型扫描电子显微镜照相观察;粒径分布用wL一2激光粒
度分析仪测定;疫苗微球蛋白含量与包裹率测定参照文献方法。
2.6微球在体内的靶向分布造影微球悬液经管饲法灌人小型猪胃内,在第3,5,8d后应用计算机x射线
断层造影仪(CT)活体观察显影微球在胃肠道的分布。8d后处死,将整个胃肠洗净,用水填充后置于塑料容
器中,用计算机x射线断层造影仪照片,观察在整个胃肠道的分布。
次,M2组、M0组在O,7,14,21d各免疫一次,方法除不中和胃酸外与前两组相同。
2.8小肠和胃粘膜淋巴细胞ASC检测参照文献方法进行。
2.9 ELISA法测定小鼠小肠粘液、唾液sie,A变化参照文献方法进行。
2.10统计学处理将各组测定值计算均数、标准差,进行显著性检验(t检验)。
3实验结果
3
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