分子生物学实验原理与常见问题解答.ppt

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宁夏疾控中心病毒科 马江涛 RNA提取原理与注意事项 商品化提取试剂盒原理: 异硫氰酸胍(GIT)-酚法 GIT与 十二烷基肌氨酸钠 (Sarcosyl)作用使蛋白质变性,从而释放RNA; GIT与β-巯基乙醇共同作用抑制RNase的活性;一定条件下(各家试剂条件不同),RNA不溶于乙醇,而DNA和蛋白质溶于乙醇溶液,通过滤柱时,RNA挂柱, DNA和蛋白质溶于滤液;在逐步洗脱的过程中,RNA不断被纯化;最后用水洗脱。 杜绝外源酶的污染: 严格戴好帽子,口罩,手套。 实验所涉及的离心管,Tip 头,移液器杆,电泳槽,实验台面等要彻底处理。 实验所涉及的试剂/溶液,尤其是水,必须确保 RNase-Free。 阻止内源酶的活性: 选择合适的匀浆方法。 选择合适的裂解液。 控制好样品的起始量。 RNA提取原理与注意事项 引物的复性温度 通过以下公式帮助选择合适的温度: Tm值(解链温度)=4(G+C)+2(A+T) 复性温度=Tm值-(5~10℃) 在Tm值允许范围内,选择较高的复性温度可大大减少引物和模板间的非特异性结合,提高PCR反应的特异性 复性时间一般为30~60sec,足以使引物与模板之间完全结合 PCR的基本原理 PCR反应条件 PCR过程 PCR的特点 PCR的基本原理 PCR反应条件 PCR过程 PCR的特点 PCR的基本原理 PCR反应条件 PCR过程 PCR的特点 PCR的基本原理 PCR反应条件 PCR过程 PCR的特点 PCR的基本原理 PCR反应条件 PCR过程 PCR的特点 PCR的基本原理 PCR反应条件 PCR过程 PCR的特点 标准的PCR反应体系(100ul体系) 10×扩增缓冲液 10ul 4种dNTP混合物 各200umol/L 引物 10~100pmol 模板 0.1~2ug Taq DNA聚合酶 2.5u Mg2+ 1.5mmol/L 加双或三蒸水至 100ul PCR反应五要素 模板 (template) 引物(primer) 酶 (Taq DNA polymerase) dNTP (dATP,dGTP,dCTP,dTTP) Mg2+ (magnesium) EB染色原理: EB插入DNA碱基对之间的结合 PCR常见问题 无扩增产物 非特异性扩增 拖尾 假阳性 无扩增产物 假阳性 PCR中应注意的事项 (一)防止污染 试剂小量分装 吸头及EP管一次性使用 器皿及工作区域要分开,无菌操作 (二)设立对照: 阳性对照: 阳性模板 阴性对照: 阴性模板 试剂对照: 除模板外的所有组分 Real-time PCR技术介绍 常用的荧光基团 由于荧光探针的引入,显著提高了实验的特异性。探针设计一般应符合以下条件: ①探针长度应在20~40个碱基左右,保证结合特异性。 ②GC碱基含量在40%~60%,避免单核苷酸序列的重复。 ③避免与引物发生杂交或重叠。 ④探针与模板结合稳定程度要大于引物与模板结合的稳定程度,因此探针的Tm值要比引物的Tm值至少高出5℃。 另外,探针的浓度、探针与模板序列的同源性,探针与引物的距离都对实验结果有影响。 特 点   FQ-PCR不仅具有普通PCR的高灵敏性,而且由于荧光探针的应用,可以通过光电传导系统直接探测PCR扩增过程中荧光信号的变化以获得定量结果,所以还具有DNA杂交的高特异性和光谱技术的高精确性,克服了常规PCR的许多缺点。FQ-PCR只须在加样时打开一次盖子,其后的过程完全是闭管操作,不需要PCR后处理,避免了常规PCR操作中的诸多弊端。 real-time PCR中应注意的事项 (一)保持反应管的清洁 管盖上严禁写字 不能徒手拿取 反应结束后严禁打开 (二)设立对照: 阳性对照: 阳性模板 阴性对照: 阴性模板 试剂对照: 除模板外的所有组分 靶序列或扩增产物 的交叉污染 原因 开管轻柔,防止形成气溶胶;防止靶序列吸入加样枪内或溅出离心管外 更换试剂、耗材 试剂分装,贮存适当。 更换实验室和所有试剂耗材。  现象:空白对照出现目的扩增产物 对策 实时荧光定量PCR定义 在PCR反应体系中加入荧光基团

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